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量子科學儀器貿易（北京）有限公司
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產品簡介:
高通量分子操控分析儀（聲鑷）--AFS，是同時對數千個生物分子進行檢測分析的一款高通量單分子操控設備。AFS芯片上的聲波（超聲波）可同時并行地在數千個生物分子（如DNA，RNA或蛋白質）施加亞皮牛頓（pN）到數百皮牛頓（pN）的力，同時具有亞毫秒的響應時間及固有穩定性。AFS技術可在核酸蛋白、藥物蛋白和抗原抗體層面上精準分析分子間相互作用，有效助力科學家研究蛋白質結構與功能相互關系，新的生物機制和細胞力學，也可用于研究和識別自由能圖，動力學速率和在反應過程中的中間態。 |
Lumicks高通量分子操控分析儀技術特征: √ 微流控芯片實驗室技術（Lab-on-Chip） √ 單分子操縱 √ 高度并行 √ 亞毫秒響應時間 √ 固有穩定性 √ 安全和友好的用戶界面 √ 高性價比 |
Lumicks高通量分子操控分析技術由玻璃微流控芯片和透明的壓電變換器構成來產生共振聲波。AFS芯片上的聲波（超聲波）可同時并行地在數千個生物分子（如DNA，RNA或蛋白質）施加亞皮牛頓（pn）到數百皮牛頓（pn）的力，同時具有亞毫秒的響應時間及固有穩定性。AFS技術可在核酸蛋白、藥物蛋白和抗原抗體層面上精準分析分子間相互作用，AFS技術可有效助力科學家研究蛋白質結構與功能相互關系，新的生物機制和細胞力學，也可用于研究和識別自由能圖，動力學速率和在反應過程中的中間態。
技術原理：
高通量分子操控分析儀（聲鑷）-AFS，是一種用于高度并行操縱單分子的儀器，包括一個易于操作和測量的智能化專業顯微鏡。AFS是采用功能強大而成本低廉的芯片裝置，能夠高精度施加力同時對數千個生物分子進行檢測，由玻璃微流控芯片和透明的壓電變換器構成來產生共振聲波。AFS芯片上的聲波（超聲波）可同時并行地在數千個生物分子（如DNA，RNA或蛋白質）施加亞皮牛頓（pn）到數百皮牛頓（pn）的力，同時具有亞毫秒的響應時間及固有穩定性。
應用領域：
應用包括：動態力譜、恒力測試、力-距離曲線、生物聚合物力學、鍵斷裂、微流變學、細胞力學、水凝膠力學性能等方向。
DNA-蛋白相互作用的研究 | DNA-應力延伸的研究 |
測定酶的活性 | 蛋白質去折疊的研究 |
抗原-抗體親和力的研究 | 細胞操控的分析 |
應用案例（點擊圖片查看）：
使用AFS檢測單分子水平的蛋白去折疊過程
AFS規格參數：
AFS是一個真正的測量單分子的工具，包括一個專用的倒置光學顯微鏡，射流模塊和電子組件，集成在一個小箱體內 （300mm×375mm×200mm）。
■ AFS專用顯微鏡 單色LED照明 波長660 nm CFI消色差物鏡（可升級） 尼康40x、NA 0.65，WD 0.65mm 校正色差，球面像差，模糊和圖像的平坦性 電動Z軸物鏡臺（可升級） 高性能兩相步進微平移臺，行程范圍5 mm，步長50 nm，亞納米級的穩定性 USB 3.0 CMOS攝像頭（可升級） 1280×1024像素（像素大小5.3 μm），1.31兆像素 全視場實時并行測量高達60赫茲 | ■ 手動XY樣品臺 微米精度20毫米行程范圍 雙燕尾導軌，使用戶能測量樣品內不同的位置 配帶有刻度按鈕的細牙螺紋軸 信號發生器（可升級） 能承受共振聲波達10Vpp（電壓峰峰值，在50Ω阻抗下） 可以實現10-5 赫茲到千赫茲甚至千赫茲以上頻率范圍的不同時間尺度的動態力學譜和力的掃描 超越的穩定性和重現性 在14位垂直分辨率下的靜態和動態力測量 | |
■ AFS芯片 AFS系統包含三種AFS芯片，每個AFS芯片都會提前校準并且給出芯片的共振頻率 加載速率范圍：10-4 PN / s到103 PN / s AFS芯片尺寸：45 mm x 15 mm x 1.275 mm **加載力：大于200 pN（4.5μm的聚苯乙烯微球，采用電壓放大器） | ■ AFS工作站及軟件（可升級） labview軟件包和一個強大的工作站。AFS軟件能夠實時以納米級分辨率并行測試數以千計的微球。 主要特點： 在25赫茲實時并行三維跟蹤60-300個微球 在25赫茲實時并行二維跟蹤300-1500個微球 在25赫茲實時跟蹤（X，Y）位置精度為2納米 在25赫茲實時跟蹤（Z）位置精度為5納米 通過參照微球的差值跟蹤進行（Z）方向漂移較正 自動對照表校準 | |
■ AFS放大器（可選） AFS的功能可通過一個電壓放大器擴展。電壓增加，應用與生物分子的**加載力相應增加。放大器可以很容易通過后面板連接到AFS。AFS計算機已經預裝所有相關的軟件和驅動程序以適用于電壓放大器。 | ||
各大用戶遍布全球：
文獻列表：
1. Harris M J， Anderson L， Raja A， et al. Measuring T‐cell avidity and enrichment using acoustic force‐ased technology. The FASEB Journal， 2020
2. Nguyen A， Brandt M， Betz T. Microchip based microrheology via Acoustic Force Spectroscopy shows that endothelial cell mechanics follows a fractional viscoelastic model. bioRxiv， 2020
3. Van Rosmalen M G M， Kamsma D， Biebricher A S， et al. Revealing in real-time a multistep assembly mechanism for SV40 virus-like particles. Science Advances， 2020
4. Cacace T， Memmolo P， Villone M M， et al. Assembling and rotating erythrocyte aggregates by acoustofluidic pressure enabling full phase-contrast tomography. Lab on a Chip， 2019
5. Marchetti M， Kamsma D， Cazares Vargas E， et al. Real-time assembly of viruslike nucleocapsids elucidated at the single-particle level. Nano letters， 2019
6. Marchetti M， Kamsma D， Vargas E C， et al. Real-time assembly of an artificial virus elucidated at the single-particle level. bioRxiv， 2019
7. Kamsma D， Wuite G J L. Single-molecule measurements using acoustic force spectroscopy (AFS)//Single Molecule Analysis. Humana Press， New York， NY， 2018
8. Kamsma D， Bochet P， Oswald F， et al. Single-cell acoustic force spectroscopy: resolving kinetics and strength of T cell adhesion to fibronectin. Cell reports， 2018
9. Cacace T， Bianco V， Paturzo M， et al. Retrieving acoustic energy densities and local pressure amplitudes in microfluidics by holographic time-lapse imaging. Lab on a Chip， 2018
10. Sorkin R， Bergamaschi G， Kamsma D， et al. Probing cellular mechanics with acoustic force spectroscopy. Molecular biology of the cell， 2018
11. Lin S N， Qin L， Wuite G J L， et al. Unraveling the biophysical properties of chromatin proteins and DNA using acoustic force spectroscopy//Bacterial Chromatin. Humana Press， New York， NY， 2018
12. Kamsma D， Bochet P， Oswald F， et al. Single-Cell Acoustic Force Spectroscopy (scAFS): Resolving kinetics and strength of T-cell adhesion to fibronectin. 2018
13. Kamsma D， Creyghton R， Sitters G， et al. Tuning the music: acoustic force spectroscopy (AFS) 2.0. Methods
14. Sitters G， Kamsma D， Thalhammer G， et al. Acoustic force spectroscopy. Nature methods， 2015
